2025年12月5日,中國農業科學院蘭州獸醫研究所鄭海學研究員團隊在國際期刊mBio(IF=4.7)上發表研究論文“Quantitative proteomic analysis identifies the unfolded protein response as a host pathway co-opted by ASFV to promote replication”。該研究通過4D無標簽定量蛋白質組學技術,首次在豬體內多器官水平描繪了ASFV感染的蛋白動態景觀。研究揭示,ASFV通過激活宿主展開未折疊蛋白反應(Unfolded Protein Response, UPR)途徑來促進病毒復制,這一發現為理解病毒-宿主相互作用提供了新視角,并為潛在抗病毒策略奠定基礎。
研究采用4D無標簽定量蛋白質組學的高分辨率技術,通過增加離子遷移維度,提高對復雜樣本中低豐度蛋白的檢測精度。相比傳統3D方法,該技術能更準確區分結構相似的肽段,適用于多器官樣本分析。
對三個器官的樣本進行蛋白提取和LC-MS/MS分析,鑒定出超過6000種蛋白。主成分分析和層次聚類顯示,生物重復間高度一致,不同器官間分離明顯。交叉分析發現,三個器官在所有時間點共有3882種核心蛋白。這些蛋白通過TCseq時間序列分析分為六個表達簇:如簇1涉及翻譯和核糖體結構,感染后表達先升后降;簇4和5富集蛋白折疊和內質網加工,表達上調。
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圖1 非洲豬瘟病毒感染后豬腎、脾淋巴結和脾臟的蛋白質組學特征
進一步,使用特異性度量識別器官和感染階段特異蛋白。以SPM >0.7為閾值,腎臟和脾臟在晚期感染(7 dpi)有更多特異蛋白,如脾臟的C反應蛋白顯著上調,激活補體系統。差異表達蛋白分析顯示,脾臟DEPs最多(尤其是7 dpi),富集于ER蛋白加工、翻譯、蛋白折疊和先天免疫響應。這些DEPs的蛋白-蛋白交互網絡揭示兩個模塊:蛋白折疊和先天免疫,由EIF2AK2(也稱PKR)連接。該激酶響應雙鏈RNA,抑制翻譯,但ASFV可能通過產生dsRNA激活它,形成復雜調控。
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圖2 組織特異性感染相關蛋白鑒定
基因集變異分析確認,UPR和干擾素響應在感染后激活。UPR是真核細胞應對ER壓力的保守機制,包括PERK、IRE1和ATF6三條分支,幫助恢復ER穩態或觸發凋亡。
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圖3 DEPs的功能模塊失調
ASFV激活UPR的體內外證據
研究的核心發現是ASFV激活所有三條UPR分支,促進病毒復制。在體內,5-7 dpi時,UPR標志物HSPA5(也稱GRP78/BiP)在三個器官顯著上調。Western blot和qPCR驗證顯示,PERK磷酸化、IRE1磷酸化、XBP1剪接(sXBP1)和ATF6裂解增加,下游基因如DDIT3(CHOP)、ATF4和DNAJC3表達升高。這表明ASFV誘導ER應激,激活完整UPR響應。
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圖4 ASFV在體內和體外激活內質網應激和未折疊蛋白反應
體外實驗在PAM細胞中證實相同模式:感染后HSPA5上調,三條分支激活,下游基因誘導。這些結果超越以往研究(如Galindo等報道的ATF6激活,或Zhong等PERK激活),首次證明ASFV在體內和體外全面劫持UPR。
病毒蛋白D117L作為UPR激活的關鍵因子
為識別病毒調控因子,團隊從22種檢測到的ASFV蛋白構建共表達網絡,發現D117L與UPR相關蛋白相關性最高。過表達實驗顯示,D117L強烈激活HSPA5和ATF6報告子,下游基因DDIT3、DNAJC3和DNAJB9轉錄增強。
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圖5 D117L通過靶向關鍵的未折疊蛋白反應(UPR)組分,激活三條UPR通路
D117L含跨膜域(38-60氨基酸),突變體分析證實該域對UPR激活必需。質譜鑒定D117L交互蛋白,包括HSPA5、CANX和PDIA4。免疫沉淀和免疫熒光確認D117L與HSPA5和CANX結合,依賴跨膜域。CANX是ER伴侶,幫助蛋白折疊;HSPA5是UPR主調控者。D117L通過這些交互,直接激活三條UPR分支。
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圖6 未折疊蛋白反應(UPR)的激活促進ASFV的復制
功能驗證顯示,抑制UPR(用4-PBA)或各分支(GSK2606414抑制PERK、4μ8C抑制IRE1、Ceapin-A7抑制ATF6)顯著降低病毒蛋白(p72、p54、p30)表達、mRNA轉錄和感染子代產量(TCID50測定)。siRNA敲減UPR傳感器也抑制復制,證實UPR對ASFV復制有利。
該研究為ASF防控提供靶點:設計抑制D117L-UPR交互的藥物,或UPR特異抑制劑,可能開發新型抗病毒療法。團隊建議擴展到更多器官、豬種或病毒株,結合基因編輯驗證機制。鑒于ASF全球流行,此類基礎研究有望加速疫苗和藥物開發,緩解養豬業壓力。
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