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      用mRNA生產抗體

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      現在的mRNA技術經常被用于疫苗開發,不過萬事皆有例外,mRNA的潛力不止于此。最近一組澳大利亞的研究團隊認為,或許mRNA轉染能從底層設計上改變抗體的生產工藝。

      這項研究題為《通過mRNA轉染在哺乳動物細胞中快速表達治療性抗體》,不僅驗證了mRNA作為生物制藥生產平臺的可行性,還展示了其相較于傳統方法的具體優劣。

      傳統方法

      目前大多數抗體藥物都是在中國倉鼠卵巢細胞(CHO細胞)中生產的。這類哺乳動物細胞能對蛋白質進行復雜的修飾(如糖基化),確保抗體具有正確的結構和功能。

      然而,傳統生產流程依賴于構建穩定細胞系,這個系統雖然產量高、質量穩定,但建立一個合格的穩定細胞株需要6到12個月的漫長周期,且技術復雜、成本高昂。

      為了在早期研發中更快地獲取少量蛋白用于測試,科學家常采用“瞬時表達”系統,比如將環狀DNA(質粒,pDNA)送入細胞。這雖然比建立穩定細胞系快,但質粒需要進入細胞核才能啟動生產,速度依然有限,且效率在非分裂細胞中會大打折扣,還存在基因組整合風險(可能引發突變),且表達啟動較慢(通常需數小時至一天)。


      相比之下,mRNA技術提供了一種更直接的路徑。與DNA不同,mRNA無需進入細胞核,只需被遞送到細胞質中,即可立即被核糖體讀取并翻譯成蛋白質。這意味著蛋白表達可在轉染后30分鐘內啟動,比pDNA快2–3小時。

      最佳轉染條件

      在這項研究中,科研人員首先用編碼綠色熒光蛋白(eGFP)的mRNA在CHO細胞中測試系統性能。


      研究人員首先需要解決的是最佳轉染條件,通過改變mRNA和轉染試劑Lipofectamine MessengerMAX的比例,研究人員同時監測三個關鍵指標:熒光強度、細胞存活率和轉染效率。

      他們發現,mRNA和轉染試劑越多,蛋白表達量越高,但細胞死亡率也隨之飆升。當轉染試劑超過每百萬細胞8微升時,無論mRNA多少,細胞存活率都跌破80%。


      在這一背景下,研究人員找到了令三個指標達到平衡的關鍵點——即每百萬細胞使用2微克mRNA和4微升轉染試劑。這個配方在最大化蛋白產量的同時,保住了細胞的健康。

      質粒DNA和穩定細胞系mRNA表達的比較

      在優化了mRNA用量與轉染試劑比例之后,研究人員開始通過實戰比較傳統兩種方法和mRNA轉染法的優劣。

      mRNA轉染后30分鐘,熒光信號就已亮起,強度達到峰值的44%;而pDNA要等到3-4小時才出現信號。 mRNA在6-8小時就沖到峰值,隨后因蛋白降解和細胞分裂逐漸下降;pDNA則慢熱得多,24小時才達峰,但表達更持久,每天只衰減20%。這說明mRNA表達在起始階段速度更快,對于藥物研發更具有時間優勢。


      生產真正的抗體

      為了真正檢驗能否生產抗體,研究人員挑選了貝伐珠單抗作為生產對象,這也是此次研究的真正核心突破,貝伐珠單抗是一種用于治療多種癌癥的人源化IgG抗體,能精準靶向血管內皮生長因子(VEGF-A)。該抗體由重鏈(HC)和輕鏈(LC)兩條多肽鏈組成,需在細胞內正確組裝并分泌。

      研究人員分別合成了編碼重鏈和輕鏈的mRNA,并以1:1質量比共轉染CHO細胞。研究人員發現mRNA轉染獲得的抗體有以下特征:

      ①mRNA轉染的抗體在24小時即可檢出,72小時內快速上升。

      ②通過Western blot和質譜分析確認,所產抗體結構完整,包含正確的重-輕鏈配對,且具備正常分泌能力。雖然也出現了少量輕鏈二聚體(兩個輕鏈誤組裝)等副產物,但主體產物完全符合預期。

      相比之下,pDNA轉染需48小時才開始檢測到抗體,雖然其表達持續時間更長,但mRNA在早期階段的產量更高、啟動更快,特別適合需要快速響應的場景。


      實時監控整個流程

      為了深入理解mRNA如何從分子轉化為成品,研究團隊開展了時間分辨率追蹤實驗,通過定量PCR、質譜和表面等離子共振(SPR)技術,精細描繪了抗體生產的動態過程。

      他們同時監測三個層面的動態:細胞內mRNA含量、細胞內蛋白含量、以及分泌到體外的蛋白量。

      0-30分鐘:mRNA被快速攝入細胞,含量達到峰值。

      30分鐘-12小時:mRNA被迅速翻譯,細胞內的抗體鏈蛋白開始積累。

      3小時-48小時:組裝好的完整抗體被分泌到細胞外,產量持續上升。

      通過數學建模(延遲Gompertz模型),他們估算出從mRNA進入細胞到成熟抗體分泌的平均延遲僅為1.7小時,也就是說細胞接收指令后不到兩小時,就吐出了第一批成品。這充分體現了mRNA系統的高效與迅捷。


      優勢與劣勢總結

      優勢1安全性:

      由于mRNA不進入細胞核、不整合基因組,徹底消除了插入突變的風險,這對監管審批和患者安全是巨大加分項。

      優勢2精準調控:

      由于輸入mRNA劑量與輸出蛋白量呈正比關系,通過調整mRNA的劑量或進行多次轉染,可以精確控制蛋白產量和時間,實現“按需生產”。

      優勢3極速響應:

      雖說一旦最初的轉染mRNA庫耗盡,產量就會下降。但mRNA的“一次性”特性恰好適合生產一些極端案例如:穩定表達的復雜蛋白(例如測試成千上萬種候選抗體)、應對突發傳染?。焖偕a中和抗體)或生產毒性蛋白(短暫表達,避免傷害細胞)。

      優勢4過程純凈:

      由于瞬時表達時間短,產生的雜質和代謝副產物相對較少,可能簡化后續的純化工藝。

      當然mRNA瞬轉的劣勢也非常明顯。目前mRNA在細胞內會被自然降解,導致蛋白表達是短暫爆發型而非長期持續型,總產量目前可能還難以與成熟的穩定細胞系匹敵。此外,大規模生產高質量mRNA的成本仍需降低。

      研究人員認為:通過優化mRNA序列設計(如使用修飾核苷酸增加穩定性)、開發新型遞送材料、以及改進細胞培養工藝,完全有潛力進一步提升產量和延長表達時間。

      參考來源:

      Chavalparit, T., Barry, C., Gunter, H., Gillard, M., Mercer, T., & Marcellin, E. (2026). Rapid expression of therapeutic antibodies in mammalian cells via mRNA transfection. mAbs, 18(1). https://doi.org/10.1080/19420862.2025.2599584

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