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      Nat Cell Biol?|?亓磊團隊開發TRANSFER系統:馴服胞啃機制,實現活體細胞精準分子投遞

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      一個被忽視了二十年的生物學問 題

      胞啃作用( trogocytosis )很重要,但一直被忽視 。

      過去二十多年,研究者們在多種免疫細胞中反復觀察到這一現象: CAR-T 細胞從腫瘤表面 " 啃食 " 靶抗原,導致抗原逃逸和友軍誤傷; NK 細胞 " 啃走 " 抑制性受體 PD-1 后功能受損; T 細胞之間甚至通過胞啃彼此共享 CAR 分子 。

      這些現象被記錄、被討論,但始終被視為免疫學領域的 " 副作用 "—— 這是一個麻煩,而非機遇 。

      斯坦福大學亓磊( Lei Stanley Qi )教授團隊做了一個大膽猜想:如果胞啃轉移的分子仍具有功能,這條天然的細胞間物質運輸通路,能否被改造成一個可編程的大分子遞送系統

      2026 年 4 月 1 日 ,亓磊團隊(第一作者為 陳心怡 )在Nature Cell Biology上發表了文章Programmable macromolecule delivery via engineered trogocytosis, 給出了回答。


      胞啃的新發現:轉移發生了,但功能丟 了

      故事從實驗臺上一個意外的 " 陰性結果 " 開始 。

      亓磊實驗室博士生 陳心怡 ( Xinyi Chen ,清華大學生物科學系本科,師從亓磊教授)將攜帶紅色熒光( mCherry )標記的 CAR 分子( 嵌合抗原受體 ) 表達于供體細胞,與表達 CD19 的靶細胞共培養后,觀察到了教科書級的胞啃表現:接觸后 5 分鐘內,靶細胞即出現來自供體的 mCherry 信號;這一過程依賴肌動蛋白,需要直接細胞接觸 —— 經典的胞啃特征,一一符合 。

      但當她構建 Sp lit - GFP 報告系統,檢測這些轉移分子是否真正發揮了功能時,結果令人沮喪: 綠色熒光始終沒有出現 。

      顯微圖像揭示了原因:被胞啃轉移的分子大量與溶酶體標志物共定位——它們沒有被利用,而是被靶細胞識別為"外來垃圾",直接送入了降解通路

      這不是失敗,這是真相的第一層: 轉移 ≠ 功能 。胞啃的物質傳輸能力是真實存在的,但內吞 - 降解這道關卡,將其攔截于細胞質之外 。

      破局:向病毒借一把 " 內吞逃逸 " 的鑰 匙

      如何讓轉移分子在被溶酶體消化之前逃出 ?

      亓磊團隊將目光投向病毒 —— 自然界進化出的內吞逃逸專家。水皰性口炎病毒糖蛋白VSVg)在酸性 pH 下激活后,能將病毒膜與內吞體膜直接融合,是分子生物學中經典的膜融合工具,但此前從未有人將其引入胞啃系統 。

      團隊擬定策略,在供體細胞上共表達 VSVg 。胞啃發生后,攜帶突變體 VSVg 的膜碎片隨貨物進入靶細胞內吞體;內吞體酸化時,突變體 VSVg 激活,觸發膜融合,貨物得以釋放進入細胞質 。

      實驗結果: GFP 信號在靶細胞中重建 —— 熒光先從內吞體膜上點亮,逐漸擴散至細胞膜,活細胞延時成像清晰捕捉到了內吞逃逸的全過程 。

      但 VSVg 解決的是膜結合蛋白的問題。對于需要進入細胞核發揮功能的貨物(如 Cas9 ),團隊引入了第二套機制: pH 敏感的 intein 結構域 。當膜融合發生、內吞體酸化時, intein 自我切割,將貨物蛋白從膜錨定結構上釋放,結合核定位信號( NLS ),實現向細胞核的定向遞送 。

      這兩套機制的組合,構成了 TRANSFER 系統的核心引擎 。

      TRANSFER 平臺:三個模塊,打通可編程遞送全鏈 路

      基于上述機制,亓磊團隊構建了TRANSFER( T rogocytosis- R edirected A ctive N anoparticle- F ree E ngineered R eporter )系統。該系統成為繼病毒載體(AAV)和脂質體(LNP)之后的第三代分子遞送載體。TRANSFER 架構由三個核心設計要素組成 :

      ① 靶向模塊 :去除胞內信號結構域的特異性受體,實現高選擇性識別而不觸發供體細胞自身的信號激活 。

      ② 逃逸模塊(“ 特洛伊木馬” ) :經突變優化的 VSVg 變體,保留膜融合活性的同時降低非特異性細胞毒性 。

      ③ 釋放模塊 : pH 敏感 intein 結構域,僅在內吞體酸性環境中觸發切割,實現貨物的條件性釋放 。

      TRANSFER系統具有極高的普適性,并在多種細胞類型( T 細胞、 NK 細胞、成纖維細胞等)和配體 - 受體組合中均實現了高效功能性遞送。貨物譜系覆蓋 : " 自殺基因 " 實現靶細胞特異性清 除 ; 鋅指核酸酶對( ZFN pair ) 協同基因組編 輯 ;以及 腺苷堿基編輯器( ABE ) ,一個體積遠超 AAV 包裝極限( ~4.5 kb )的大分子,實現了靶細胞中精準基因編 輯 。

      最后一點值得重點強調: 載貨量是大分子基因藥物遞送的瓶頸 , TRANSFER 從原理上徹底繞開了這一限制 。

      超越遞送:活細胞作為可編程的決策單 元

      TRANSFER 最值得關注的能力,或許不在于它能送什么,而在于它能 按什么邏輯送 。

      通過整合 SynNotch 合成受體系統,亓磊團隊為供體細胞賦予了多輸入邏輯控制能力:僅當同時檢測到兩種預設抗原信號時,遞送才被觸發 —— 即 "AND 門 " 邏輯 。

      這意味著什么?現有遞送載體( AAV 、 LNP )本質上是 " 無腦投遞員 " ,進入體內后無法感知環境、無法做出判斷。 活細胞可以 。

      它們能持續生產貨物、感知信號、做出決策,甚至主動遷移至病灶所在的微環境。這些能力,是非活體遞送體系在架構層面無法企及的 。

      亓磊教授的視野:細胞是下一代遞送載 體

      亓磊教授長期深耕合成生物學與基因治療交叉領域,作為 CRISPRi 的發明者,他的研究圍繞一個核心命題: 如何讓細胞成為可編程的藥物用于疾病治療 。

      TRANSFER 是這一理念的又一次延伸。在亓磊教授看來,將細胞視為 " 活的遞送裝置 " ,不是隱喻,而是工程目標 —— 它們將在患者體內持續工作,感知、響應、遞送,精準修復病變細胞,無論是腫瘤、遺傳病還是衰老相關疾病 。

      這項工作為基于細胞的、可編程大分子遞送建立了概念框架與技術基礎,也為合成生物學如何真正進入治療領域提供了一條清晰的路徑


      https://www.nature.com/articles/s41556-026-01920-0

      制版人: 十一

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