未來的CAR-T療法可能僅需一針注射液，CRISPR直接在體內改造T細胞

本文是專業學術論文解讀，不做醫療建議。

作為一類新型免疫療法，嵌合抗原受體 T 細胞（CAR-T）療法近年來在癌癥治療領域取得了巨大成功。它能在某些復發或難治性血液腫瘤中展現出驚人療效，為使用其他治療均失敗的患者帶來持久緩解的希望。

然而，其高度個性化的體外制備流程不僅耗時耗力、成本高昂，還要求患者在前期清除原有免疫細胞，這既增加了感染風險，也限制了該療法的普及。為克服這些瓶頸，生物醫學領域的學者們一直在探索如何制造出成本更低、更安全、更具可及性的 CAR-T 產品，主流方案包括但不限于無需體外制造的體內直接工程 CAR-T、健康供體來源的異體現成 CAR-T，以及各類提高制造效率的工藝創新等。

近日，《自然》（Nature）雜志同期刊發了一篇重磅研究論文及兩篇點評文章，重點介紹了體內直接工程 CAR-T 的突破性進展：科學家們成功利用 CRISPR 技術，在小鼠體內實現癌癥免疫細胞的精準工程化。這或許預示著，未來只需一次簡單的注射，你體內的免疫細胞就能被精準改造，化身一支訓練有素的“抗癌特種兵”，直搗病灶，清除腫瘤。

（來源：Nature News）

CAR-T 療法的演進：從體外輸注到體內原位編程

CAR-T 細胞療法的原理是通過基因工程改造患者自身的 T 細胞，使其表面表達一種名為 CAR 的人工合成受體，其能識別癌細胞表面的特異性抗原，從而激活 T 細胞，精準地識別、殺傷癌細胞。對于某些復發或難治性血癌，如白血病、淋巴瘤和骨髓瘤，CAR-T 細胞療法的效果遠超現有其他療法。

但現行的 CAR-T 療法制造過程復雜且成本高昂，極大地限制了其可及性。具體而言，醫生需要從患者體內抽血，分離出 T 細胞，然后在實驗室中利用病毒載體將 CAR 基因導入 T 細胞基因組，使其表達 CAR。接著，這些經過改造的 CAR-T 細胞需要在體外擴增、進行嚴格的質量檢測，最后再回輸到患者體內。

在此之前，患者還需要接受毒性較大的化療預處理，清除自身未經改造的免疫細胞，為 CAR-T 細胞在體內擴增和發揮作用創造空間。這不僅增加了患者的痛苦，也使其在治療期間面臨更高的感染風險。

（來源：BBC/War in the Blood）

為克服這些限制 CAR-T 療法推廣的因素，科學家們一直在積極探索“體內工程化”T 細胞的方法，直接在患者體內改造 T 細胞，使其獲得抗癌能力。這種方法一旦成功，不僅可以大大降低治療成本，簡化治療流程，甚至有望避免對身體傷害過大的預處理環節。

“起初，這聽起來像個瘋狂的想法，簡直是科幻小說。”該研究的通訊作者、加州大學舊金山分校的免疫學家賈斯汀·艾奎姆（Justin Eyquem）回憶道。早在 2017 年，他和同事們就曾利用 CRISPR-Cas9 技術，將 CAR 基因精準插入離體 T 細胞基因組的特定區域，顯著提高了 CAR-T 細胞的有效性。當時他們便開始思考，能否有一天在體內實現這一壯舉。

近年來，隨著基因編輯技術的不斷成熟，體內 CAR-T 細胞治療的研發取得了重要進展，首批相關療法已進入早期臨床試驗。然而，安全性一直是體內基因編輯面臨的核心問題。例如，如果 CAR 基因被隨機插入 T 細胞基因組，可能會引發致癌突變；更重要的是，為了保證治療安全，必須確?；蚓庉嬛蛔饔糜?T 細胞，不誤傷其他細胞類型，尤其是生殖細胞。

CRISPR 技術構建共遞送系統，力求“直達靶心”

在這些安全性挑戰之下，研究團隊選擇利用 CRISPR 技術構建一套創新的體內基因編輯系統，實現 T 細胞的精準重編程。

他們的核心策略是采用兩向量遞送系統，其一是包膜遞送載體（EDV），即攜帶 CRISPR-Cas9 基因編輯所需的 Cas9 蛋白和引導 RNA（gRNA）。EDV 表面設計有特異性結合 T 細胞表面蛋白 CD3 的抗體片段，確保 Cas9 系統能夠精準地遞送至 T 細胞。此外，CD3 的刺激還能誘導 T 細胞增殖，為后續的同源定向修復提供條件。

其二是腺相關病毒（AAV）載體，它負責攜帶編碼 CAR 蛋白的 DNA，這段 DNA 兩端帶有 T 細胞受體α恒定基因（TRAC）的同源序列。研究團隊還對 AAV 進行了進化，使其能夠規避預存的抗 AAV 抗體，并能通過與 T 細胞和自然殺傷細胞表面的 CD7 蛋白相互作用，特異性地感染 T 細胞。

這項設計的精妙之處在于，一個 T 細胞必須同時接收提供切割工具的 EDV 和提供修復模板的 AAV 這兩種載荷，才能被成功改造為 CAR-T 細胞。

圖 | 體內編輯免疫細胞（來源：Nature）

這種位點特異性插入具有多重優勢，首先是能夠確保 CAR 基因的安全插入，避免隨機插入可能導致的致癌風險。其次，將 CAR 基因插入 T 細胞特有的 TRAC 基因位點，能夠讓 CAR 的表達僅限于 T 細胞，并受到生理性調控，最大限度避開對其他細胞類型的誤編輯。最后，這項技術還避免了 CAR 基因隨機整合后，可能出現的 T 細胞過度激活或耗竭等功能障礙問題。

研究證實，該系統在體外對人 T 細胞的敲入效率顯著提升，在小鼠模型中，CAR 插入和表達幾乎僅限于 CD4+和 CD8+ T 細胞，在自然殺傷細胞、巨噬細胞、造血干細胞及惡性 B 細胞系中幾乎檢測不到。

更新后，除了能治血液瘤，實體肉瘤也能治了

研究團隊在多個小鼠模型中驗證了這一系統的有效性。這些小鼠被植入了不同類型的人類癌細胞，包括白血病、多發性骨髓瘤和子宮肉瘤。結果令人振奮，在接受治療的小鼠體內，白血病和多發性骨髓瘤細胞被完全清除。

其中，新系統對白血病和骨髓瘤小鼠的療效優于體外制備策略，有部分小鼠還形成了長期免疫記憶，超過一半的肉瘤（實體瘤）小鼠實現了完全緩解。馬爾拉漢醫學研究所的免疫學家雷切爾·佩雷特（Rachel Perret）博士特別指出，此前 CAR-T 治療實體瘤的成功率較低，這一突破的“鼓舞人心”之處還在于，有望推動該療法在實體瘤領域發揮作用。

工程后的 CAR-T 細胞成功表現出增殖與激活特征，同時保留了干細胞樣特性，有利于長期存活，研究期間并未觀察到明顯的系統性毒性或體重異常。

目前，艾奎姆已聯合創立了生物技術公司 Azalea Therapeutics，正在猴子身上測試這一方法，計劃于 2027 年年底前啟動人體臨床試驗，最終實現臨床轉化。

波士頓大學的合成生物學家 Wilson Wong 博士指出，在這項技術中，大部分治療物質會遞送至 T 細胞，但仍有少量可能進入其他細胞，尤其是肝臟，但他也表示，這項新系統“令人印象深刻”，為復雜的體內 CAR-T 療法指明了方向，“從技術上講，這非常令人興奮?！?/p>

盡管這項研究取得了突破性進展，但將該技術推向臨床仍面臨諸多挑戰。首先，需要進行更深入的研究，以排除可能出現的意外基因修飾，包括對非 T 細胞類型或非 TRAC 基因組位點的脫靶效應。考慮到經過編輯的 T 細胞在組織中廣泛分布，這項評估將是艱巨的任務。而且，治療效果能持續多久，以及是否會引入其他不必要的基因組變化，這些都有待進一步觀察。

該技術還存在免疫失調的風險，目前的小鼠模型使用的是健康的 T 細胞，而癌癥患者的免疫細胞通常處于功能失調狀態。未來需研究該方法在癌癥免疫微環境模型中的效果，以及是否需要結合其他免疫療法來支撐自體合成 CAR-T 細胞的抗腫瘤反應。

此外，經典 CAR-T 療法中的免疫細胞清除預處理，除了為 CAR-T 細胞騰出空間，還具有減少免疫抑制細胞和改變腸道微生物群等功能，這些都可能影響 CAR-T 細胞的活性。體內工程化方法無法結合這種預處理，因此需要探索其他免疫調節相關的輔助策略。

盡管存在這些挑戰，這種靶向雙遞送策略，依舊為體內位點特異性插入治療基因提供了一種令人興奮的可能。這項工作不僅是 CAR-T 細胞療法領域的重大飛躍，更預示著基因編輯技術將以更安全、更高效、更可及的方式，改寫未來醫學的藍圖。

參考文獻：

https://www.nature.com/articles/d41586-026-00857-6

https://www.nature.com/articles/d41586-026-00634-5

https://www.nature.com/articles/s41586-026-10235-x

運營/排版：何晨龍

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