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      收藏!WB內(nèi)參蛋白如何選擇,期刊要求整膜和未裁剪膜長什么樣?

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      寫在前面】本文探討蛋白印跡內(nèi)參選擇、期刊對蛋白的要求以及蛋白整膜和未裁剪膜案例。記得分享收藏哦!

      內(nèi)參的選擇

      在western blot(WB)實(shí)驗(yàn)中內(nèi)參蛋白是非常重要且必須的一部分,內(nèi)參蛋白通常是由細(xì)胞中管家基因編碼的蛋白,內(nèi)參保證了每個泳道中蛋白上樣量相同,不同泳道上的蛋白以相同的效率從凝膠轉(zhuǎn)到膜上,不同泳道上抗體孵育(包括一抗和二抗)、信號檢測都是一致的,是量化目的蛋白相對表達(dá)量的重要標(biāo)尺。

      插敘:前期我們有推送過蛋白印跡相關(guān)SCI期刊提出的要求( 點(diǎn)擊下文閱讀 )

      1. 理想的內(nèi)參蛋白需滿足的條件

      理想的內(nèi)參蛋白應(yīng)滿足以下條件:

      (1)高度或中度表達(dá),排除太高或低表達(dá);

      (2)在測試條件下內(nèi)參蛋白水平要保持恒定(與總蛋白量相比),例如,用特定藥物處理或未經(jīng)特定藥物處理、正常細(xì)胞和癌細(xì)胞、細(xì)胞周期以及細(xì)胞是否活化、內(nèi)源性或外源性因素等;

      (3)內(nèi)參蛋白和目的蛋白相對分子量有差異,內(nèi)參和目標(biāo)蛋白的檢測限都在動態(tài)范圍內(nèi),可在信號不飽和的情況下揭示內(nèi)參和目標(biāo)蛋白量的變化。

      2. 哺乳動物細(xì)胞中常用的內(nèi)參

      全細(xì)胞或細(xì)胞漿中:GAPDH、β-Actin、β-Tubulin、Vinculin等;

      細(xì)胞核中:Lamin B1、TBP、HDAC、PCNA、Histone H3等;

      線粒體中:HSP60、COX IV等。

      (1) GAPDH:甘油醛-3-磷酸脫氫酶,在糖酵解過程中將3-磷酸甘油醛進(jìn)一步磷酸化的一個酶,其編碼基因?qū)儆诠芗一颍瑥V泛表達(dá)于各種細(xì)胞組織中,且表達(dá)相對穩(wěn)定,故常常用來作為western blot的內(nèi)參。GAPDH會隨著組織老化,表達(dá)水平發(fā)生變化,因此不適合在年齡差別很大的組織樣本中作上樣內(nèi)參;缺氧時GAPDH聚集,表達(dá)上調(diào),因此不能在涉及氧氣的相關(guān)研究中作為內(nèi)參;此外,GAPDH是糖酵解過程中的一個酶,故在研究腫瘤代謝過程時應(yīng)慎用。

      (2) β-Actin:β肌動蛋白,一種非肌型肌動蛋白,也是一類常見的管家基因編碼的蛋白質(zhì),主要功能是組成細(xì)胞的骨架。在各種組織中廣泛表達(dá),表達(dá)水平相對恒定。但在胞質(zhì)分裂、內(nèi)吞或應(yīng)激等進(jìn)程中,細(xì)胞骨架重組信號刺激纖絲狀肌動蛋白的片段化和解聚;在原發(fā)性乳腺癌細(xì)胞中,肌動蛋白被高度磷酸化;在凋亡條件下,心肌和骨骼肌中均能觀察到β-Actin的清除,因此,在相關(guān)研究中需要謹(jǐn)慎選擇。

      (3) β-Tubulin:是Tubulin(微管蛋白)家族中的一員,微管蛋白在物種間高度保守,不同亞型的微管蛋白也有顯著的同源性。β-Tubulin是一類重要的管家基因編碼的蛋白,在細(xì)胞周期過程中扮演重要角色,廣泛用于作為WB內(nèi)參。微管蛋白是多種藥物的作用靶點(diǎn),如抗癌藥物紫杉醇、長春堿和長春新堿,抗痛風(fēng)藥物秋水仙堿和抗真菌藥物灰黃霉素,因此有這些藥物作用時,內(nèi)參勿選Tubulin。

      (4) Lamin B1:核纖層蛋白B1,核纖層蛋白是一種核膜結(jié)構(gòu)組分,用于支撐核被膜并參與細(xì)胞周期中核被膜的解體和再形成,對維持正常的細(xì)胞功能(如細(xì)胞周期控制、DNA復(fù)制)非常重要。Lamin B1在物種間高度保守,常用于有核被膜的樣品作為內(nèi)參。在細(xì)胞凋亡時,Lamin B1可被caspase剪切,另外,核纖層細(xì)胞B1基因LMNB1的復(fù)制與神經(jīng)系統(tǒng)疾病,成年期發(fā)病腦白質(zhì)營養(yǎng)不良的發(fā)病機(jī)制相關(guān),在相關(guān)研究中應(yīng)予以注意。

      總之,選擇內(nèi)參主要考慮以下方面:

      (1)樣本種屬來源,哺乳動物的組織或者細(xì)胞樣本,植物、昆蟲等來源樣本,適用的內(nèi)參各不相同;

      (2)目的蛋白分子量,通常應(yīng)該保證目的蛋白與內(nèi)參蛋白分子量相差5kDa以上,此外,不同公司、同一公司不同貨號的抗體相對分子量大小也會有些差異;

      (3)目的蛋白表達(dá)部位,全細(xì)胞和胞漿蛋白、胞核蛋白、核膜蛋白、線粒體蛋白等都有對應(yīng)的內(nèi)參蛋白供選擇;

      (4)實(shí)際的實(shí)驗(yàn)環(huán)境,比如某些細(xì)胞中,由于組織缺氧、糖尿病等因素會導(dǎo)致GAPDH的表達(dá)增高;在凋亡實(shí)驗(yàn)時,Lamin B1等不 適合作為內(nèi)參;在加入抗癌和抗真菌藥物時,β-Tubulin的表達(dá)易受影響,不適合作為內(nèi)參;(5)組織特異性,不同內(nèi)參蛋白在不同組織中的表達(dá)可能不一樣,因此不同的組織應(yīng)選擇不同的內(nèi)參。

      這里再放一張之前群友提供的內(nèi)參選擇圖,建議收藏~


      一區(qū)期刊:要求的整膜、未裁剪的膜


      蛋白印跡(WB)是一種基于抗體的實(shí)驗(yàn)技術(shù),用于檢測和定量靶蛋白,靶蛋白通常在從細(xì)胞或組織中提取的復(fù)雜混合物中。雖然有許多新的替代技術(shù),如酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)、免疫熒光和質(zhì)譜(MS),但在一定程度上都有一定的局限性。ELISA缺乏加載控制,免疫熒光是一種原位技術(shù),是半定量,而質(zhì)譜昂貴,取決于實(shí)驗(yàn)技術(shù)和條件。因此, WB仍然是實(shí)驗(yàn)室中最常用的蛋白質(zhì)檢測方法 。然而,許多科學(xué)期刊已經(jīng)表達(dá)了對WB的擔(dān)憂,以努力減少潛在的錯誤和增加可重復(fù)性的。在這里,我們將重點(diǎn)討論WB實(shí)驗(yàn)中的一些基本注意事項。因此,本指南旨在為未來的實(shí)驗(yàn)和論文寫作提供一個更新的、更簡潔和可用的參考。


      圖1:具有代表性的WB。a. WB的過飽和條帶。b. 空格(紅色虛線)表示印跡拼接。c. 切割印跡。d. 完整的印跡。

      應(yīng)避免印跡的過飽和暴露,以將條帶信號強(qiáng)度(以光密度或熒光單位表示)保持在定量的線性范圍內(nèi)。建議進(jìn)行旨在生成標(biāo)準(zhǔn)曲線的試驗(yàn)實(shí)驗(yàn),特別是當(dāng)使用新的抗體或方法時。圖1a顯示了一個過飽和條帶的例子,它可能掩蓋或至少減少了樣品之間的差異。條帶之間的比較(無論是否有統(tǒng)計學(xué)意義)和與加載對照之間的歸一化只應(yīng)在相同的印跡上進(jìn)行。如果樣品數(shù)量超過一個單一凝膠的容量,則相同數(shù)量的對照樣品可以包含在單獨(dú)的凝膠中。然而,與這個對照樣本的比較仍然應(yīng)局限于同一印跡內(nèi)的樣本。

      單獨(dú)的印跡永遠(yuǎn)不應(yīng)該合并到一個圖像中。如果在一個圖面板中并排組織了多個斑點(diǎn),那么它們之間應(yīng)該有清晰可見的空間(如圖所示1b)。如果某些通道包含與主題無關(guān)的數(shù)據(jù),可以從印跡中剪出,但完整的印跡仍應(yīng)根據(jù)期刊的要求提供給編輯或?qū)徃迦耍▓D1c,d)。然而,如果這些不相關(guān)的通道位于印跡的中間,它們不應(yīng)該被簡單地移除。在這種情況下,凝膠應(yīng)該用重新組織的樣品重新運(yùn)行。在所有的印跡圖像上都應(yīng)顯示或標(biāo)記分子量標(biāo)記物的位置。如果印跡已被水平裁剪,則至少應(yīng)顯示兩個相鄰的標(biāo)記位置(即,在條帶的上方和下方),如圖所示1c。

      舉例期刊對WB等結(jié)果的嚴(yán)格要求

      現(xiàn)在越來越多的機(jī)構(gòu)及期刊注重原始數(shù)據(jù),尤其提示不能認(rèn)為改變科學(xué)研究的結(jié)果。今天小編給大家介紹的這本SCI期刊 JOURNAL OF CELLULAR BIOCHEMISTRY(J CELL BIOCHEM) 便是提到了這一點(diǎn),新更新的“作者須知”里面提到從2020年7月后都必須提供WB等的原始gel/blots圖片,且保證重復(fù)率,若發(fā)現(xiàn)有人為修改的地方一律予以拒稿。

      1.報告WB和其他電泳結(jié)果:必須提供未經(jīng)處理的圖像

      (1)自2020年7月以來,本期刊要求發(fā)表凝膠電泳和/或blots結(jié)果的論文作者提供原始的未經(jīng)處理的圖像。作者應(yīng)提交“原始圖像檢查”或可選擇發(fā)表未經(jīng)處理的圖像在附件信息中。

      (2)每個圖片均需提供未切割的原始的免疫蛋白印跡。


      來自J CELL BIOCHEM投稿要求

      2.具體的Gel 和blots要求:

      (1)所有圖像必須有足夠的分辨率和質(zhì)量。

      (2)重新排列條帶或組合來自多個實(shí)驗(yàn)的圖像,如從多個印跡中拼接來制作特定的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,圖像處理導(dǎo)致原始包含的信息失真或等的操作和編輯一般都是禁止的,期刊會立即拒稿,不會進(jìn)一步送審。

      (3)這種行為可能被認(rèn)為是科學(xué)上的不端行為,需要進(jìn)一步的調(diào)查。

      (4)對照的Marker、陽性和陰性對照都應(yīng)該包括在每個gel/blots中。

      (5)重復(fù)性很重要。重復(fù)的結(jié)果作者應(yīng)隨時準(zhǔn)備提交它們以供審查。重復(fù)的次數(shù)應(yīng)在圖注中清楚地標(biāo)明。


      來自J CELL BIOCHEM投稿要求

      3. 定量和半定量

      (1)不能籠統(tǒng)地說某一蛋白的表達(dá)水平“高”或“低”。

      (2)所有的量化必須對屬于線性響應(yīng)范圍內(nèi)的信號進(jìn)行 (例如,用于量化的波段不能過度曝光或過載)。

      (3)不鼓勵對不同凝膠進(jìn)行定量比較;如有必須清楚說明。


      來自J CELL BIOCHEM投稿要求

      其他要求詳見:

      https://onlinelibrary.wiley.com/page/journal/10974644/homepage/forauthors.html

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